Computertomografie (CT) bevindingen traf RT-PCR

Kwantitatieve meting van het aantal kopieën van transposon met behulp van de Droplet Digital PCR

Die spontane Proliferation transponierbarer Elemente trägt zur genetischen Vielfalt auf verschiedenen Ebenen bei, wie z. B. somatischer Mosaikismus, genetische Divergenz in der Inhabitants und Genomentwicklung. Diese genetische Vielfalt ist für die Anpassung der Pflanzen an sich verändernde Umweltbedingungen von wesentlicher Bedeutung und dient als wertvolle Ressource für die Verbesserung der Kulturpflanzen. Daher ist es wichtig, die Variation der Kopienzahl transponierbarer Elemente mit Präzision und Effizienz zu messen, um das Ausmaß ihrer Verbreitung zu verstehen.

Die Droplet Digital PCR (ddPCR) ist eine genaue und empfindliche Technik, mit der die Variation der Kopienzahl eines Transposons gemessen werden kann. Kurz gesagt, genomische DNA wird extrahiert, verdaut und in Tausende von Tröpfchen im Nanoliter-Maßstab aufgeteilt. Die TaqMan-Echtzeit-PCR, gefolgt von der Endpunkt-Fluoreszenzdetektion, ermöglicht die quantitative Messung der Kopienzahl von Matrizen-DNAs. Hier in diesem Kapitel beschreiben wir die schrittweise Vorgehensweise von ddPCR am Beispiel des EVADE-Retrotransposons von Arabidopsis.

Vergelijking van Computertomografie (CT) bevindingen traf RT-PCR bij de Diagnose van COVID-19 bij kinderen

Ziel: Ziel  dieser Studie battle es, die Ergebnisse der Thorax -Computertomographie (CT) mit den Testergebnissen der reversen Transkriptionspolymerasekettenreaktion (RT-PCR) bei Kindern mit wahrscheinlicher oder endgültiger Diagnose der Coronavirus-Krankheit 2019 (COVID-19) zu vergleichen.

Methoden:  In diese retrospektive Archivstudie wurden pädiatrische Patienten eingeschlossen, die im Krankenhaus mit einer möglichen oder endgültigen Diagnose von COVID-19 nachuntersucht wurden und bei der Präsentation eine Brust-CT hatten. CT-Scan-Bilder der Patienten wurden von einem pädiatrischen Radiologen neu interpretiert und mit ihren RT-PCR-Testergebnissen verglichen.

Ergebnisse:  Von den insgesamt 89 Patienten hatten 33 destructive und 56 constructive RT-PCR-Checks . Das Vorhandensein von Lungenläsionen und die Konsolidierung waren in der RT-PCR-negativen Gruppe statistisch signifikant höher als in der RT-PCR-positiven Gruppe (p = 0,037 bzw. 0,001). Die Lappenbeteiligung von 0% bis 25% battle in der RT-PCR-positiven Gruppe höher (p = 0,001), und die Lappenbeteiligung von 25% bis 50% und 50% bis 75% battle in der RT-PCR-negativen Gruppe signifikant höher (p = 0,001 bzw. 0,005). Die zentrale und perihiläre Beteiligung erwies sich in der RT-PCR-negativen Gruppe als statistisch signifikant (p = 0,008 bzw. 0,005).

Schlussfolgerung:  Brust-CT-Befunde können einige Hinweise für die Vorhersage der RT-PCR- Positivität bei Kindern mit einer wahrscheinlichen Diagnose von COVID-19 liefern. Ein Prozentsatz der Lappenbeteiligung von bis zu 25% spricht für Patienten mit positivem RT-PCR- Check, während eine Lappenbeteiligung von 25% bis 75%, eine zentrale und perihiläre Beteiligung sowie eine Konsolidierung zugunsten von Patienten mit negativer RT-PCR interpretiert werden können Prüfung.

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Taq DNA Polymerase with dNTP Mix (6000U)

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Taq DNA Polymerase with dNTP Mix (500U)

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Description: Minimum order quantity: 1 unit of 5x1mL

Fast Probe Master Mix with Rox (5000 rxn)

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Description: Minimum order quantity: 1 unit of 50x1mL

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Fast-Taq DNA Polymerase with 10mM dNTP Mix (500U)

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Fast-Taq DNA Polymerase with 10mM dNTP Mix (2500U)

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High-Taq DNA Polymerase with 10mM dNTP Mix (250U)

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High-Taq DNA Polymerase with 10mM dNTP Mix (4x250U)

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High-Taq DNA Polymerase with 10mM dNTP Mix (5000U)

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Taq DNA Polymerase - 5,000 units with separate dNTP Mix

3245d 1/EA
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Ultra SYBR Green qPCR Master Mix (2X, with ROX I)

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Fast Probe Master Mix with Rox, trial size (100 rxn)

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EUR 141
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 1mL

SYBR Green qPCR Master Mix

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RT Master Mix for qPCR

HY-K0510 1 mL (100 rxns)
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R5101-200 4X50 rxns
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Seamless cloning Master Mix (Kit)

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Taqman Master Mix-Low ROX

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2 × Vazyme LAmp Master Mix

P311-01 1 ml
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P515-03 15 ml
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AceQ qPCR Probe Master Mix

Q112-02 500 rxn (20 μl/rxn)
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AceQ qPCR Probe Master Mix

Q112-03 2500 rxn (20 μl/rxn)
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AceQ U+ Probe Master Mix

Q113-02 500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 267

AceQ U+ Probe Master Mix

Q113-03 2500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 842

Hot Start Taq DNA Polymerase - 1000 units with seperate dNTP mix

3293d 1/EA
EUR 357

Fast Plus EvaGreen Master Mix for qPCR with Rox (200 rxn)

31014 2x1mL
EUR 228
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 2x1mL

Fast Plus EvaGreen qPCR Master Mix with low Rox (500 rxn)

31014-1 5x1mL
EUR 437
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 5x1mL

Fast Plus EvaGreen qPCR Master Mix with low Rox (5000 rxn)

31014-2 50x1mL
EUR 3576
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 50x1mL

Fast Plus EvaGreen qPCR Master Mix with high Rox (500 rxn)

31015-1 5x1mL
EUR 437
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 5x1mL

Fast Plus EvaGreen qPCR Master Mix with high Rox (5000 rxn)

31015-2 50x1mL
EUR 3576
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 50x1mL

Forget-Me-Notâ„¢ EvaGreen qPCR Master Mix with ROX (500 reactions)

31042-1 5x1mL
EUR 272
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 5x1mL

Forget-Me-Notâ„¢ EvaGreen qPCR Master Mix with ROX (200 reactions)

31042-20mL 2x10mL
EUR 494
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 2x10mL

Forget-Me-Notâ„¢ EvaGreen qPCR Master Mix with ROX (100 reactions)

31042-T 1mL
EUR 114
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 1mL

Forget-Me-Notâ„¢ Universal Probe Master Mix with ROX (500 reactions)

31044-1 1kit
EUR 330
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 1kit

Forget-Me-Notâ„¢ Universal Probe Master Mix with ROX (100 reactions)

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EUR 114
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 1kit

Taq 2x PCR Mix 100 rxn

BA01501 100rxn
EUR 94
Description: High quality Taq polymerase for different PCR variations and downstream applications.

Taq 5x PCR Mix 12.5 mM

BT10402 250rxn
EUR 109
Description: High quality Taq polymerase for different PCR variations and downstream applications.

Maximo Dry-Master Mix (Lyophilized Polymerase)

S295 192 rcs (20µl, in plates or tubes)
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amfiSure ONE PCR Master Mix(2X)

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P7000-010 10x1 ml
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P7000-050 50x1 ml
EUR 1211

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P7000-100 100x1 ml
EUR 2102

amfiRivert II cDNA Synthesis Master Mix

R5500-050 50 rxns
EUR 374

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R5500-100 2x50rxns
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amfiRivert cDNA Synthesis Prime Master Mix

R5610-050 50 rxns
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R5610-100 2x50 rxns
EUR 671

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R5610-200 4X50 rxns
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R5610-500 10x50 rxns
EUR 2548

Fast Probe Master Mix (200 rxn)

31005 2x1ML
EUR 234
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 2x1ML

Fast Probe Master Mix (500 rxn)

31005-1 5x1ML
EUR 466
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 5x1ML

Fast Probe Master Mix (5000 rxn)

31005-2 50x1ML
EUR 3871
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 50x1ML

PCR-EZ D-PCR MASTER MIX

BS294 100RXN, 100prep
EUR 93.5

Pfu 2x Master Mix - 200 Reactions

3326 1/EA
EUR 300

Gloria Nova HS 2x Master Mix

RK20717 1mL Ask for price

Entrans 2X qPCR Probe Master Mix

RK21208 40 RXN Ask for price

2x SYBR Green qPCR Master Mix

B21202 5 mL
EUR 224
Description: Our 2x SYBR Green qPCR master mix performs toe to toe in all qPCR assays with the most well known brands on the market but surpases them significantly in cost-efficiency.

2x SYBR Green qPCR Master Mix

B21203 25 mL
EUR 856
Description: Our 2x SYBR Green qPCR master mix performs toe to toe in all qPCR assays with the most well known brands on the market but surpases them significantly in cost-efficiency.

2 × AceTaq Master Mix (Dye Plus)

P412-01 1 ml
EUR 119

2 × AceTaq Master Mix (Dye Plus)

P412-02 5 ml
EUR 158

2 × AceTaq Master Mix (Dye Plus)

P412-03 15 ml
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AceQ Universal SYBR qPCR Master Mix

Q511-02 500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 221

AceQ Universal SYBR qPCR Master Mix

Q511-03 2500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 646

ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix

Q711-02 500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 221

ChamQ Universal SYBR qPCR Master Mix

Q711-03 2500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 646

ChamQ Geno-SNP Probe Master Mix

Q811-02 500 rxn (20 μl/rxn)
EUR 277

ChamQ Geno-SNP Probe Master Mix

Q811-03 2500 rxn (20 μl/rxn)
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Fast Plus EvaGreen qPCR Master Mix with low Rox (100 rxn): (1mL)

31014-T 1mL
EUR 134
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 1mL

Fast Plus EvaGreen Master Mix for qPCR with High Rox (200 rxn)

31015 2x1mL
EUR 228
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 2x1mL

Fast Plus EvaGreen qPCR Master Mix with High Rox (100 rxn): (1mL)

31015-T 1mL
EUR 134
Description: Minimum order quantity: 1 unit of 1mL

Reverse Transcriptase RT PCR Master Mix (5X)

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Reverse Transcriptase RT PCR Master Mix (5X)

MB1002-200reactions 200 reactions
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Reverse Transcriptase RT PCR Master Mix (5X)

MB1002-25reactions 25 reactions
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SYBR Green qPCR Master Mix (High ROX)

HY-K0521 1 mL (100 rxns)
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SYBR Green qPCR Master Mix (Low ROX)

HY-K0522 5 mL (500 rxns )
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Het schatten van de Effectiviteit van routinematige asymptomatische PCR-Checks bij verschillende Häufigkeiten für den Nachweis von SARS-CoV-2-Infektionen

Hintergrund:  Routinemäßige asymptomatische Checks mittels RT-PCR bei Personen, die mit gefährdeten Bevölkerungsgruppen interagieren, z. B. medizinisches Private in Krankenhäusern oder Pflegekräfte in Pflegeheimen, wurden eingesetzt, um Ausbrüche bei gefährdeten Bevölkerungsgruppen zu verhindern. Obwohl die Spitzenempfindlichkeit der RT-PCR hoch sein kann, variiert die Wahrscheinlichkeit des Nachweises einer Infektion im Verlauf einer Infektion. Die Wirksamkeit von routinemäßigen asymptomatischen Checks hängt daher von der Testhäufigkeit und den zeitlichen Schwankungen des PCR- Nachweises ab.

Methoden:  Wir haben ein Bayes’sches statistisches Modell an einen Datensatz von zweimal wöchentlichen PCR-Checks von Mitarbeitern des britischen Gesundheitswesens angepasst , die unabhängig von den Symptomen mit einem selbst verabreichten Nasopharynxabstrich durchgeführt wurden. Wir haben gemeinsam die Infektionszeiten und die Wahrscheinlichkeit eines positiven PCR-Checks über die Zeit nach der Infektion geschätzt. Anschließend verglichen wir asymptomatische Teststrategien, indem wir die Wahrscheinlichkeit berechneten, dass eine symptomatische Infektion vor dem Auftreten der Symptome erkannt wird, und die Wahrscheinlichkeit, dass eine asymptomatische Infektion innerhalb von 7 Tagen nach der Infektion erkannt wird.

Ergebnisse:  Wir schätzten, dass die Wahrscheinlichkeit, dass der PCR-Check eine Infektion feststellte, four Tage nach der Infektion einen Höchstwert von 77% (54-88%) erreichte und 10 Tage nach der Infektion auf 50% ( 38-65%) abnahm . Unsere Ergebnisse deuten auf eine wesentlich höhere Wahrscheinlichkeit hin, Infektionen 1-Three Tage nach der Infektion zu erkennen als zuvor veröffentlichte Schätzungen. Wir schätzten, dass Checks jeden zweiten Tag 57% (33-76%) der symptomatischen Fälle vor Beginn und 94% (75-99%) der asymptomatischen Fälle innerhalb von 7 Tagen erkennen würden, wenn die Testergebnisse innerhalb eines Tages zurückgegeben würden.

Schlussfolgerungen:  Unsere Ergebnisse legen nahe, dass routinemäßige asymptomatische Checks die Erkennung eines hohen Anteils infizierter Personen zu Beginn ihrer Infektion ermöglichen können, vorausgesetzt, die Checks sind häufig und die Zeit vom Check bis zur Benachrichtigung der Ergebnisse ist ausreichend schnell.

Positieve COVID19-PCR-patiënten als Negatieve-Kontrollen für COVID19-Antilichaamtests

Serologische COVID-19-Antikörpertests werden kürzlich für eine relativ schnelle, erschwingliche und wertvolle Bewertung der Immunität gegen COVID-19-Infektionen benötigt . Darüber hinaus können sie bei der Bewertung der Angemessenheit des Impfprozesses und seiner Langlebigkeit helfen. Der derzeitige Ansatz zur Auswahl der positiven und negativen Kontrollproben für die Validierung dieser Checks unterliegt Einschränkungen. Hier schlagen wir die Verwendung von Blutproben von positiven COVID-19-Patienten vorzu Beginn des Krankheitsverlaufs als Negativkontrollblutproben für die Antikörpertests. Für mehr Präzision können sowohl die destructive als auch die constructive Kontrollprobe von denselben Patienten erhalten werden, wobei die Genauigkeit des Checks von seiner Fähigkeit abhängt, die Serokonversion vom negativen zum positiven Antikörpernachweis innerhalb desselben Patienten nachzuweisen.

Wenn die Validierung des Checks mit dem Nachweis / der Sequenzierung des Virusgenoms bei diesen COVID-19-Patienten einhergeht , kann dies auch dazu beitragen , die Genauigkeit des Checks beim Nachweis der Immunantwort auf bestimmte Virusvarianten zu bestimmen. Letzteres ist erforderlich, um die COVID-19-Krise richtig zu bewältigen, neue Impfstoffe herzustellen und die Effizienz der Impfstoffe zu bewerten. Schließlich könnte dieser Ansatz von den Aufsichtsbehörden im Rahmen der Validierung der Checks angefordert / formuliert und von den Gesundheitseinrichtungen vor ihrer klinischen Anwendung „intern“ bezogen werden.

Een systematische Überprüfung und Meta-Analyse van ontslagen COVID-19-patiënten die opnieuw positief testen op RT-PCR

Hintergrund:  Mit der erhöhten Anzahl von Patienten , die nach der Behandlung mit COVID-19 entlassen wurden , haben immer mehr Studien Fälle gemeldet, deren erneuter Check während der Rekonvaleszenzphase positiv battle (RP), was die Welt vor eine neue Herausforderung für die öffentliche Gesundheit stellt.

Methoden:  Wir haben vom 1. Dezember 2019 bis zum 31. Dezember 2020 nach PubMed, Net of Science, der Cochrane Library, CNKI, WanFang und VIP gesucht . Die eingeschlossenen Studien wurden unter Verwendung kritischer JBI-Bewertungsinstrumente und der Newcastle-Ottawa-Skala bewertet. Die RP-Charge von Entlassungspatienten wurde durch eine Metaanalyse analysiert. Wir haben uns an die PRISMA-Richtlinien für die Berichterstattung gehalten.

Ergebnisse:  Wir haben 117 Studien mit 2669 RP-Teilnehmern nach der Entlassung eingeschlossen. Die methodische Qualität von 66 Fallberichten battle niedrig bis hoch, 42 Fallserien und Three Kohortenstudien waren moderat bis hoch, Three Fallkontrollstudien waren moderat und Three Querschnittsstudien waren niedrig bis moderat. Die klinischen Manifestationen der meisten RP-Patienten waren gentle oder asymptomatisch, und CT-Bildgebung und Laboruntersuchungen waren normalerweise regular. Die vorhandenen Risikofaktoren legen nahe, dass getrennten Patienten, älteren Patienten und Patienten mit Komorbiditäten mehr Aufmerksamkeit geschenkt werden sollte. Die zusammenfassende RP-Charge betrug 12,2% (95% CI 10,6-13,7) mit hoher Heterogenität ( 2  = 85%).

Interpretation:  Bisher sind die Ursachen und Risikofaktoren von RP bei entlassenen Patienten nicht vollständig verstanden. Um diese Probleme zu untersuchen, sind hochwertige ätiologische und klinische Studien erforderlich, um weitere Strategien zur Kontrolle und Verhinderung ihres Auftretens zu entwickeln.

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